Comparador Básico
Microbiología General (11111)
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Curso: 1º
Cuatrim.: B
ECTS: 6
Carácter: FBa
ERT: ETSIAMN
Título: Grado en Biotecnología
Dpto: BIOTECNOLOGÍA
Contenido:
1. INTRODUCCION
1.1 Tema 1.- Desarrollo histórico de la Microbiología. Orígenes. Miembros del mundo microbiano. Descubrimiento de los microorganismos. Pasteur y Koch. Inmunología. Impacto de los microorganismos en el hombre. Campos de la Microbiología. El alcance de la vida microbiana. Esquemas de clasificación.
2. RELACION ENTRE ESTRUCTURA Y FUNCION EN PROCARIOTAS
2.1 Tema 2.- Estructura y función de la célula procariótica. Morfología y tamaño. Partes fundamentales de la célula procariota. Membrana plasmática. Pared celular. Cápsulas y capas mucosas. DNA, plásmidos y elementos transponibles. Ribosomas. Inclusiones citoplasmáticas. Flagelos y movilidad. Pelos y fimbrias. Endosporas bacterianas.
2.2 Tema 3.- Observación de los microorganismos. El microscopio óptico. Tipos de microscopía óptica: campo claro, contraste de fases, campo oscuro, fluorescencia. Imágenes tridimensionales. El microscopio electrónico Colorantes microbiológicos. Técnicas de tinción.
3. NUTRICIÓN, CRECIMIENTO Y REPRODUCCIÓN
3.1 Tema 4.- Nutrición microbiana. Principios de nutrición microbiana. Composición química de la célula procariota. Nutrientes. Crecimiento microbiano en superficies: biopelículas.
3.2 Tema 5.- Crecimiento microbiano y reproducción. Expresión matemática del crecimiento. Curva de crecimiento. Cultivo contínuo. Efecto de los factores ambientales sobre el crecimiento: agua, efectos osmóticos, Temperatura, oxígeno, acidez y alcalinidad. Métodos de recuento microbiano.
3.3 Tema 6.- Aislamiento, cultivo y conservación. Medios de cultivo: tipos y componentes. Técnicas de obtención de cultivos puros. Conservación de microorganismos. Las colecciones de cultivo. Métodos de cultivo para bacterias microaerofílicas y anaerobias. Pruebas bioquímicas de diagnóstico.
4. METABOLISMO MICROBIANO
4.1 Tema 7.- Metabolismo microbiano. Energética microbiana. Metabolismo productor de energía. Fermentación y respiración. Bioluminiscencia. Metabolismo de los lípidos. Metabolismo de los hidrocarburos alifáticos y aromáticos. Compuestos nitrogenados. Fijación del nitrógeno. Fotosíntesis bacteriana.
5. CONTROL MICROBIANO
5.1 Tema 8.- Control de los microorganismos: agentes físicos. Factores que influyen sobre la acción de los agentes antimicrobianos. Control por agentes físicos. Radiaciones: UV y radiaciones ionizantes. Esterilización por el calor: métodos. Esterilización por filtración. Acción de las ondas sonoras. Efecto de la presión
5.2 Tema 9.- Control de los microorganismos: agentes químicos. Modo de acción de los agentes químicos. El desinfectante ideal.. Determinación del poder bactericida Desinfectantes y antisépticos. Quimioterapia antimicrobiana. Antibióticos. Agentes antifúngicos y antivirales. Resistencia a los agentes antimicrobianos
6. INFECCION Y PATOGENICIDAD
6.1 Tema 10.- Infección y enfermedad. Biota normal del cuerpo humano y animal. Relación hospedador-parásito. Reservorios. Transmisión de las enfermedades infecciosas. Vías de entrada y salida. Agentes de transmisión. Adhesión y colonización del agente patógeno. Invasión. Crecimiento y multiplicación. Factores de virulencia. Toxinas microbianas. Mecanismos de resistencia del hospedador. Defensas inespecíficas del hospedador. Defensas específicas: inmunidad
6.2 Tema 11.- Inmunología. Células del sistema inmune: linfocitos. Antígenos y anticuerpos: naturaleza y propiedades. Anticuerpos monoclonales. Reacciones antígeno¿anticuerpo in vitro. Reacción de precipitación. Reacción de aglutinación: inmunofluorescencia. El sistema complemento. Opsonización. Análisis inmunoenzimático: elisa y radioinmunoanálisis Reacción de neutralización. Reacciones de hipersensibilidad: alergia y anafilaxia
7. DIVERSIDAD MICROBIANA
7.1 Tema 12.- Diversidad microbiana. Taxonomía microbiana: introducción. Rangos taxonómicos. Divisiones de los seres vivos. El Manual de Bergey. Arqueas. Proteobacterias. Firmicutes. Actinobacterias. Espiroquetas y Tenericutes
7.2 Tema 13.- Las Arqueas. Metanógenas. Reductoras del S. Halófilas extremas. Sin pared. celular. Termófilas extremas metabolizadoras de azufre.
7.3 Tema 14.- Las Bacterias Proteobacterias. Firmicutes. Actinobacterias. Espiroquetas. Tenericures
8. PRACTICAS DE LABORATORIO
8.1 Cultivo de microorganismos en diferentes tipos de medios
8.2 Aislamiento de microorganismos
8.3 Recuentos de microorganismos: Métodos de recuento total, recuento de viables, NMP, filtración
8.4 Tinción de microorganismos. Manejo del microscopio
8.5 Identificación bioquímica de microorganismos
1.1 Tema 1.- Desarrollo histórico de la Microbiología. Orígenes. Miembros del mundo microbiano. Descubrimiento de los microorganismos. Pasteur y Koch. Inmunología. Impacto de los microorganismos en el hombre. Campos de la Microbiología. El alcance de la vida microbiana. Esquemas de clasificación.
2. RELACION ENTRE ESTRUCTURA Y FUNCION EN PROCARIOTAS
2.1 Tema 2.- Estructura y función de la célula procariótica. Morfología y tamaño. Partes fundamentales de la célula procariota. Membrana plasmática. Pared celular. Cápsulas y capas mucosas. DNA, plásmidos y elementos transponibles. Ribosomas. Inclusiones citoplasmáticas. Flagelos y movilidad. Pelos y fimbrias. Endosporas bacterianas.
2.2 Tema 3.- Observación de los microorganismos. El microscopio óptico. Tipos de microscopía óptica: campo claro, contraste de fases, campo oscuro, fluorescencia. Imágenes tridimensionales. El microscopio electrónico Colorantes microbiológicos. Técnicas de tinción.
3. NUTRICIÓN, CRECIMIENTO Y REPRODUCCIÓN
3.1 Tema 4.- Nutrición microbiana. Principios de nutrición microbiana. Composición química de la célula procariota. Nutrientes. Crecimiento microbiano en superficies: biopelículas.
3.2 Tema 5.- Crecimiento microbiano y reproducción. Expresión matemática del crecimiento. Curva de crecimiento. Cultivo contínuo. Efecto de los factores ambientales sobre el crecimiento: agua, efectos osmóticos, Temperatura, oxígeno, acidez y alcalinidad. Métodos de recuento microbiano.
3.3 Tema 6.- Aislamiento, cultivo y conservación. Medios de cultivo: tipos y componentes. Técnicas de obtención de cultivos puros. Conservación de microorganismos. Las colecciones de cultivo. Métodos de cultivo para bacterias microaerofílicas y anaerobias. Pruebas bioquímicas de diagnóstico.
4. METABOLISMO MICROBIANO
4.1 Tema 7.- Metabolismo microbiano. Energética microbiana. Metabolismo productor de energía. Fermentación y respiración. Bioluminiscencia. Metabolismo de los lípidos. Metabolismo de los hidrocarburos alifáticos y aromáticos. Compuestos nitrogenados. Fijación del nitrógeno. Fotosíntesis bacteriana.
5. CONTROL MICROBIANO
5.1 Tema 8.- Control de los microorganismos: agentes físicos. Factores que influyen sobre la acción de los agentes antimicrobianos. Control por agentes físicos. Radiaciones: UV y radiaciones ionizantes. Esterilización por el calor: métodos. Esterilización por filtración. Acción de las ondas sonoras. Efecto de la presión
5.2 Tema 9.- Control de los microorganismos: agentes químicos. Modo de acción de los agentes químicos. El desinfectante ideal.. Determinación del poder bactericida Desinfectantes y antisépticos. Quimioterapia antimicrobiana. Antibióticos. Agentes antifúngicos y antivirales. Resistencia a los agentes antimicrobianos
6. INFECCION Y PATOGENICIDAD
6.1 Tema 10.- Infección y enfermedad. Biota normal del cuerpo humano y animal. Relación hospedador-parásito. Reservorios. Transmisión de las enfermedades infecciosas. Vías de entrada y salida. Agentes de transmisión. Adhesión y colonización del agente patógeno. Invasión. Crecimiento y multiplicación. Factores de virulencia. Toxinas microbianas. Mecanismos de resistencia del hospedador. Defensas inespecíficas del hospedador. Defensas específicas: inmunidad
6.2 Tema 11.- Inmunología. Células del sistema inmune: linfocitos. Antígenos y anticuerpos: naturaleza y propiedades. Anticuerpos monoclonales. Reacciones antígeno¿anticuerpo in vitro. Reacción de precipitación. Reacción de aglutinación: inmunofluorescencia. El sistema complemento. Opsonización. Análisis inmunoenzimático: elisa y radioinmunoanálisis Reacción de neutralización. Reacciones de hipersensibilidad: alergia y anafilaxia
7. DIVERSIDAD MICROBIANA
7.1 Tema 12.- Diversidad microbiana. Taxonomía microbiana: introducción. Rangos taxonómicos. Divisiones de los seres vivos. El Manual de Bergey. Arqueas. Proteobacterias. Firmicutes. Actinobacterias. Espiroquetas y Tenericutes
7.2 Tema 13.- Las Arqueas. Metanógenas. Reductoras del S. Halófilas extremas. Sin pared. celular. Termófilas extremas metabolizadoras de azufre.
7.3 Tema 14.- Las Bacterias Proteobacterias. Firmicutes. Actinobacterias. Espiroquetas. Tenericures
8. PRACTICAS DE LABORATORIO
8.1 Cultivo de microorganismos en diferentes tipos de medios
8.2 Aislamiento de microorganismos
8.3 Recuentos de microorganismos: Métodos de recuento total, recuento de viables, NMP, filtración
8.4 Tinción de microorganismos. Manejo del microscopio
8.5 Identificación bioquímica de microorganismos
Contexto:
Se trata de una asignatura obligatoria para los estudiantes del grado de Biotecnología. Proporciona una visión general del mundo microbiano, su relación con el resto de seres vivos y con los diferentes entornos en los que habitan los microorganismos. Dado su carácter introductorio, los estudiantes adquirirán los conceptos y competencias básicas necesarias para explorar temas más avanzados en asignaturas posteriores.
Descripción:
La asignatura presenta todos los aspectos fundamentales y básicos de la microbiología que el alumno de biotecnología debe utilizar para poder comprender el resto de materias del grado y desarrollar su actividad profesional: Papel de los microorganismos en los ecosistemas, Interacciones microorganismos/seres vivos. Técnicas para el cultivo, observación e identificación de los microorganismos. Procesos metabólicos microbianos. Métodos de control. Descripción de los principales microorganismos de interés clínico y biotecnológico. Aplicaciones industriales y biotecnológicas microbianas.
Evaluación:
CONTENIDOS TEÓRICOS (3 actos de evaluación): A lo largo del curso, los contenidos teóricos se evaluarán mediante 3 actos de evaluación , con un peso en la nota final del 30 % para cada uno de ellos. Los 3 actos podrán ser recuperables PRACTICAS de LABORATORIO (1 acto de evaluación): Prueba escrita corta al finalizar la tanda de prácticas de laboratorio, con un peso en la nota final de la asignatura del 10%. REQUISITOS: La nota final de la asignatura se obtendrá promediando las notas de cada uno de los actos de evaluación, teniendo en cuenta la ponderación indicada arriba. Para poder promediar se debe obtener una valoración mínima de 4 sobre 10 en cada uno de los 3 actos de evaluación correspondientes a la TEORÍA. Si el requisito no se cumple, la asignatura estará suspendida, y se deberá recuperar la parte o las partes suspendidas en el acto de Recuperación. En el caso de no asistir a las Prácticas de Laboratorio, o no cumplir los requisitos de asistencia mínima ( 90%), la asignatura se calificará como No presentado. ACTO DE RECUPERACIÓN. Los actos de evaluación realizados en el acto de Recuperación tendrán exactamente el mismo peso que los de sus correspondientes realizados durante el curso. Los criterios descritos anteriormente para los actos de evaluación continua se aplican también al acto de recuperación. Si no se alcanza la nota mínima de 4 en alguno de los actos de evaluación de los CONCEPTOS TEÓRICOS, la asignatura estará suspendida. Si no se alcanza la nota mínima de 4 en alguno de los actos de evaluación de CONCEPTOS TEÓRICOS , pero al aplicar la fórmula general, la asignatura obtuviera un resultado de mayor o igual a 5, la calificación final de la asignatura sería de 4,5. La asignatura estará superada si la nota final alcanza la calificación de igual o mayor a 5 sobre 10. Las calificaciones obtenidas en los actos de evaluación de CONTENIDOS TEÓRICOS no se guardarán para los siguientes cursos. SUBIDA DE NOTA. Los alumnos podrán presentarse a subir nota en el examen de Recuperación, a cualquiera de los dos actos de evaluación de la teoría, teniendo en cuenta que la nota definitiva será la obtenida en el último examen realizado. Para ello, el alumno deberá comunicarlo a los profesores con una antelación de, al menos, 3 días naturales antes de la fecha de realización del Acto de Recuperación. DISPENSA DE ASISTENCIA. En el caso de dispensa a la asistencia de clases (teóricas y/o prácticas) el alumno podrá presentarse a los actos de evaluación que tienen lugar durante el curso o únicamente al Acto de Recuperación. La nota final será obtenida del mismo modo descrito anteriormente, exigiendo los mismos requisitos. Los estudiantes con dispensa que no hayan podido asistir a las sesiones prácticas, realizarán un examen práctico La ausencia no justificada a cualquier actividad con un porcentaje mínimo de asistencia obligatoria supondrá la calificación de No presentado.
Biología Celular (11112)
Editar IA
Curso: 1º
Cuatrim.: A
ECTS: 8
Carácter: FBa
ERT: ETSIAMN
Título: Grado en Biotecnología
Dpto: PRODUCCIÓN VEGETAL
Contenido:
1. UNIDAD DIDÁCTICA 1. ESTUDIO DE LA ESTRUCTURA, COMPOSICIÓN Y FUNCIONAMIENTO CELULAR.
1.1 TEMA 1. INTRODUCCIÓN A LA CITOLOGÍA. Origen y divergencia celular. Tipos de células.
1.2 TEMA 2. LAS MEMBRANAS CELULARES. La bicapa lipídica y las proteínas de membrana. Propiedades y características.
1.3 TEMA 3. TRANSPORTE A TRAVÉS DE MEMBRANA. Difusión por la bicapa lipídica. Proteínas transportadoras.
1.4 TEMA 4. LA PARED DE LA CÉLULA VEGETAL. Composición, estructura y funciones. Punteaduras y Plasmodesmos. Movimiento de sustancias a través de los Plasmodesmos.
1.5 TEMA 5. SEÑALIZACIÓN Y COMUNICACIÓN INTERCELULAR. Vía de la señalización: señales o ligandos químicos, receptores, segundos mensajeros y proteínas intermediarias.
1.6 TEMA 6. EL CITOESQUELETO. Características y función de los microtúbulos, los microfilamentos de actina y los filamentos intermedios.
1.7 TEMA 7. ENERGÉTICA CELULAR I. CLOROPLASTOS y FOTOSÍNTESIS. Tipos, estructura y composición de los Plastos.Pigmentos fotosintéticos y espectros de absorción. Fotosistemas: organización y función. Fotofosforilación cíclica y no cíclica. Fijación y reducción del CO2 y fotorrespiración en las plantas C4 y CAM. El ciclo de Calvin. Peroxisomas: estructura y función.
1.8 TEMA 8. ENERGÉTICA CELULAR II. FERMENTACIÓN y RESPIRACIÓN CELULAR. Producción de ATP mediante oxidación de moléculas orgánicas en citosol y mitocondrias.
1.9 TEMA 9. EL NÚCLEO INTERFÁSICO. La envoltura nuclear, el complejo del poro y paso de sustrancias a su través, la cromatina, el nucleolo.
1.10 TEMA 10. RIBOSOMAS Y SÍNTESIS DE PROTEÍNAS. Tipos de ribosomas. El código genético y los ARNt. Síntesis, modificación, plegamiento y degradación de las proteínas. Direccionamiento de proteinas a orgánulos diana.
1.11 TEMA 11. SISTEMA DE ENDOMEMBRANAS: RETÍCULO ENDOPLASMÁTICO, APARATO DE GOLGI., LISOSOMAS Y VACUOLAS. Estructura y funciones.
1.12 TEMA 12. ENDOCITOSIS, EXOCITOSIS Y VESÍCULAS DE TRANSPORTE. Mecanismo de formación de vesículas revestidas y de fusión de membranas. Endocitosis mediada por receptor y función lisosómica. Vía de la secreción en células animales y vegetales
1.13 TEMA 13. EL CICLO CELULAR Y LA DIVISIÓN CELULAR. Concepto, etapas y regulación del ciclo celular. Cromosomas metafásicos. La mitosis y sus etapas. La citocinesis en la célula animal y en la vegetal.
1.14 TEMA 14 (OPCIONAL). LA REPRODUCCIÓN SEXUAL Y LA MEIOSIS. Alternancia de generaciones y ciclos biológicos. Recombinación de genes y ventajas adaptativas. La meiosis: concepto y etapas.
2. UNIDAD DIDÁCTICA 2. TEJIDOS ANIMALES Y TÉCNICAS DE ESTUDIO DE LAS CÉLULAS.
2.1 SEMINARIO 1. ORIGEN DE LA VIDA Y DE LOS DISTINTOS TIPOS CELULARES. Teorías que explican la aparición de las primeras células y su posterior evolución
2.2 SEMINARIO 2. TÉCNICAS DE ESTUDIO DE LA CÉLULA: MICROSCOPÍA. Bases de los diferentes tipos de microscopía para el estudio de la célula
2.3 SEMINARIO 3. TÉCNICAS DE ESTUDIO DE LA CÉLULA II: SEPARACIÓN DE FRACCIONES Y DE MOLÉCULAS. Bases de las técnicas de cromatografía y centrifugación empleadas para el estudio de células y componentes subcelulares
2.4 SEMINARIO 4. TEJIDO EPITELIAL. Características del tejido y tipos celulares
2.5 SEMINARIO 5. TEJIDOS CONJUNTIVO Y ADIPOSO. Características del tejido y tipos celulares
2.6 SEMINARIO 6. TEJIDOS CARTILAGINOSO Y OSEO. Características del tejido y tipos celulares
2.7 SEMINARIO 7. TEJIDO MUSCULAR. Características del tejido y tipos celulares
2.8 SEMINARIO 8. TEJIDO NERVIOSO. Características del tejido y tipos celulares
2.9 SEMINARIO 9. SANGRE. Características del tejido y tipos celulares
3. ESTUDIO PRÁCTICO SOBRE ESTRUCTURA Y FUNCIÓN DE CÉLULAS Y TEJIDOS VEGETALES
3.1 PRÁCTICA 1. MANEJO DEL MICROSCOPIO ÓPTICO. Morfometría. Observación de bacterias, levaduras, mohos, algas, líquenes y musgos. Presentación de los tejidos vegetales.
3.2 PRÁCTICA 2. HISTOLOGÍA VEGETAL I. Estudio al microscopio de células y tejidos vegetales.
3.3 PRÁCTICA 3. HISTOLOGÍA VEGETAL II. Estudio al microscopio de células y tejidos vegetales.
3.4 PRÁCTICA 4. FENÓMENOS OSMÓTICOS EN CÉLULAS ANIMALES Y VEGETALES. Observación y valoración de los fenómenos de lisis, plasmólisis y turgencia en células animales y vegetales en medios hipotónicos, isotónicos e hipertónicos.
3.5 PRÁCTICA 5. POTENCIAL HÍDRICO. Medida en tubérculo de patata.
3.6 PRÁCTICA 6. PLASTOS Y FOTOTSÍNTESIS. Aislamiento de cloroplastos y Reacción de Hill. Extracción y espectro de absorción de las clorofilas (opcional).
3.7 PRÁCTICA 7. RESPIRACIÓN CELULAR. Medida de la emisión de CO2 por tejidos vegetales o levaduras.
3.8 PRÁCTICA 8. LA DIVISIÓN CELULAR. Mitosis en ápice radical de ajo.
1.1 TEMA 1. INTRODUCCIÓN A LA CITOLOGÍA. Origen y divergencia celular. Tipos de células.
1.2 TEMA 2. LAS MEMBRANAS CELULARES. La bicapa lipídica y las proteínas de membrana. Propiedades y características.
1.3 TEMA 3. TRANSPORTE A TRAVÉS DE MEMBRANA. Difusión por la bicapa lipídica. Proteínas transportadoras.
1.4 TEMA 4. LA PARED DE LA CÉLULA VEGETAL. Composición, estructura y funciones. Punteaduras y Plasmodesmos. Movimiento de sustancias a través de los Plasmodesmos.
1.5 TEMA 5. SEÑALIZACIÓN Y COMUNICACIÓN INTERCELULAR. Vía de la señalización: señales o ligandos químicos, receptores, segundos mensajeros y proteínas intermediarias.
1.6 TEMA 6. EL CITOESQUELETO. Características y función de los microtúbulos, los microfilamentos de actina y los filamentos intermedios.
1.7 TEMA 7. ENERGÉTICA CELULAR I. CLOROPLASTOS y FOTOSÍNTESIS. Tipos, estructura y composición de los Plastos.Pigmentos fotosintéticos y espectros de absorción. Fotosistemas: organización y función. Fotofosforilación cíclica y no cíclica. Fijación y reducción del CO2 y fotorrespiración en las plantas C4 y CAM. El ciclo de Calvin. Peroxisomas: estructura y función.
1.8 TEMA 8. ENERGÉTICA CELULAR II. FERMENTACIÓN y RESPIRACIÓN CELULAR. Producción de ATP mediante oxidación de moléculas orgánicas en citosol y mitocondrias.
1.9 TEMA 9. EL NÚCLEO INTERFÁSICO. La envoltura nuclear, el complejo del poro y paso de sustrancias a su través, la cromatina, el nucleolo.
1.10 TEMA 10. RIBOSOMAS Y SÍNTESIS DE PROTEÍNAS. Tipos de ribosomas. El código genético y los ARNt. Síntesis, modificación, plegamiento y degradación de las proteínas. Direccionamiento de proteinas a orgánulos diana.
1.11 TEMA 11. SISTEMA DE ENDOMEMBRANAS: RETÍCULO ENDOPLASMÁTICO, APARATO DE GOLGI., LISOSOMAS Y VACUOLAS. Estructura y funciones.
1.12 TEMA 12. ENDOCITOSIS, EXOCITOSIS Y VESÍCULAS DE TRANSPORTE. Mecanismo de formación de vesículas revestidas y de fusión de membranas. Endocitosis mediada por receptor y función lisosómica. Vía de la secreción en células animales y vegetales
1.13 TEMA 13. EL CICLO CELULAR Y LA DIVISIÓN CELULAR. Concepto, etapas y regulación del ciclo celular. Cromosomas metafásicos. La mitosis y sus etapas. La citocinesis en la célula animal y en la vegetal.
1.14 TEMA 14 (OPCIONAL). LA REPRODUCCIÓN SEXUAL Y LA MEIOSIS. Alternancia de generaciones y ciclos biológicos. Recombinación de genes y ventajas adaptativas. La meiosis: concepto y etapas.
2. UNIDAD DIDÁCTICA 2. TEJIDOS ANIMALES Y TÉCNICAS DE ESTUDIO DE LAS CÉLULAS.
2.1 SEMINARIO 1. ORIGEN DE LA VIDA Y DE LOS DISTINTOS TIPOS CELULARES. Teorías que explican la aparición de las primeras células y su posterior evolución
2.2 SEMINARIO 2. TÉCNICAS DE ESTUDIO DE LA CÉLULA: MICROSCOPÍA. Bases de los diferentes tipos de microscopía para el estudio de la célula
2.3 SEMINARIO 3. TÉCNICAS DE ESTUDIO DE LA CÉLULA II: SEPARACIÓN DE FRACCIONES Y DE MOLÉCULAS. Bases de las técnicas de cromatografía y centrifugación empleadas para el estudio de células y componentes subcelulares
2.4 SEMINARIO 4. TEJIDO EPITELIAL. Características del tejido y tipos celulares
2.5 SEMINARIO 5. TEJIDOS CONJUNTIVO Y ADIPOSO. Características del tejido y tipos celulares
2.6 SEMINARIO 6. TEJIDOS CARTILAGINOSO Y OSEO. Características del tejido y tipos celulares
2.7 SEMINARIO 7. TEJIDO MUSCULAR. Características del tejido y tipos celulares
2.8 SEMINARIO 8. TEJIDO NERVIOSO. Características del tejido y tipos celulares
2.9 SEMINARIO 9. SANGRE. Características del tejido y tipos celulares
3. ESTUDIO PRÁCTICO SOBRE ESTRUCTURA Y FUNCIÓN DE CÉLULAS Y TEJIDOS VEGETALES
3.1 PRÁCTICA 1. MANEJO DEL MICROSCOPIO ÓPTICO. Morfometría. Observación de bacterias, levaduras, mohos, algas, líquenes y musgos. Presentación de los tejidos vegetales.
3.2 PRÁCTICA 2. HISTOLOGÍA VEGETAL I. Estudio al microscopio de células y tejidos vegetales.
3.3 PRÁCTICA 3. HISTOLOGÍA VEGETAL II. Estudio al microscopio de células y tejidos vegetales.
3.4 PRÁCTICA 4. FENÓMENOS OSMÓTICOS EN CÉLULAS ANIMALES Y VEGETALES. Observación y valoración de los fenómenos de lisis, plasmólisis y turgencia en células animales y vegetales en medios hipotónicos, isotónicos e hipertónicos.
3.5 PRÁCTICA 5. POTENCIAL HÍDRICO. Medida en tubérculo de patata.
3.6 PRÁCTICA 6. PLASTOS Y FOTOTSÍNTESIS. Aislamiento de cloroplastos y Reacción de Hill. Extracción y espectro de absorción de las clorofilas (opcional).
3.7 PRÁCTICA 7. RESPIRACIÓN CELULAR. Medida de la emisión de CO2 por tejidos vegetales o levaduras.
3.8 PRÁCTICA 8. LA DIVISIÓN CELULAR. Mitosis en ápice radical de ajo.
Contexto:
Esta base desarrollada en la asignatura permite posteriormente avanzar en el conocimiento de la organización tisular y organográfica, así como en la distribución de funciones que, una vez coordinadas e integradas, hacen que los seres pluricelulares más complejos (animales y plantas superiores) se desarrollen a partir de una única célula o interactúen a lo largo de su ciclo vital con los medios biótico y abiótico que le rodean. Por lo tanto, los conceptos desarrollados son fundamentales como base para asignaturas como Fisiología vegetal, Fisiología animal, Cultivo in vitro y transformación genética de plantas, Ingeniería tisular,¿
Descripción:
En la asignatura de Biología celular se introduce el origen y características de las primeras células, y cómo dan lugar a los precursores de las células de los principales dominios biológicos. A continuación, se desarrollan la estructura y función de los orgánulos presentes en las células animales y vegetales, así como las de ciertas estructuras como las paredes celulares, ribosomas o el citoesqueleto. También se incluye en la asignatura los procesos de división celular, como origen de nuevas células, o de señalización, que permite la comunicación entre células. El conocimiento de la estructura, composición y funcionamiento de cada uno de los orgánulos celulares es imprescindible para entender el funcionamiento integrado de cada tipo de célula y lo que diferencia a un tipo de otro.
Evaluación:
Clases de Teoría. La asistencia a clases teóricas no será obligatoria salvo los días en los que tenga lugar una de las pruebas escritas. Se avisará con una semana de antelación mediante e-mail de las fechas en las que se realizarán dichas pruebas escritas de manera que no se podrá argumentar ignorancia para justificar la ausencia. La prueba escrita de respuesta abierta consistirá en dos actos de evaluación independientes de corta duración (<60 minutos) a realizar en el aula a lo largo del curso y durante el tiempo de clase. En conjunto, la calificación de la prueba escrita representará un 60% de la calificación final de la asignatura. Los alumnos que no acudan a alguna de las pruebas escritas o no superen el 3,5 sobre 10 en cualquiera de ellas podrán recuperarlas el día previsto por la ETSIAMN al final del cuatrimestre para examen de la asignatura de Biología Celular. Seminarios. La asistencia a clases de seminarios es obligatoria. La falta injustificada a alguna de las sesiones programadas restará dos puntos sobre 10 por cada falta en la calificación final de esta actividad. La actividad se evaluará mediante examen oral (presentación de seminario en grupo) y representará un 20% de la calificación final. La no participación en la presentación del seminario conlleva la calificación de 0 en esta actividad. Prácticas en laboratorio. La asistencia a las prácticas en laboratorio es obligatoria. La falta injustificada a alguna de las sesiones programadas restará dos puntos sobre 10 por cada falta en la calificación final de esta actividad. En esta actividad se evaluarán dos conceptos: las cuestiones propuestas relativas a cada práctica (Observación), que representarán un 10% de la calificación final, y el trabajo académico, realizado en prácticas y en grupo, que representará un 10% de la calificación final. Por lo tanto, la fórmula para la Nota final es: Nota primer parcial teoría*0,3 + Nota segundo parcial teoría*0,3 + Nota seminarios*0,2 + Nota actividades de prácticas*0,1 + Nota trabajo académico prácticas*0,1 Una vez finalizado el proceso de evaluación (incluidas las pruebas de recuperación de los exámenes de teoría si fuera pertinente), si al aplicar la fórmula para calcular la calificación final sale mayor o igual a 5, pero no se ha alcanzado la nota mínima de 3,5 sobre 10 (o de 1,05 sobre 3) para compensar, en algún acto de evaluación correspondiente a cada una de las pruebas escritas, la calificación final será 4,5. Aquellos alumnos que tengan dispensa docente, aprobada por el centro, y no puedan asistir a las clases de asistencia obligatoria de prácticas y seminario, o a los actos de evaluación programados, deberán hacer un único examen sobre los contenidos teóricos y prácticos desarrollados en la asignatura (fecha y hora a acordar con el profesor), y preparar un seminario sobre un tema a designar por el profesor y presentarlo en fecha, hora y lugar acordados con el profesor. Los alumnos que, teniendo aprobada la asignatura, deseen subir nota podrán hacerlo en la prueba de recuperación bajo las siguientes condiciones: 1) Sólo se podrá subir nota del conjunto de la asignatura (exceptuando la actividad Seminario) mediante examen escrito que abarque todos los contenidos las clases teóricas en aula, y de las actividades de prácticas, tanto de observación como de trabajo académico. 2) Los alumnos que deseen presentarse a este examen deberán solicitarlo por escrito en el plazo que se les indique declarando que renuncian a las notas obtenidas anteriormente en las pruebas ordinarias correspondientes. En caso de que suspendieran este examen, y dado que ya habían aprobado la asignatura, se les otorgará una calificación final de aprobado 5. Una vez tramitada la solicitud, si el alumno decide no presentarse ha de avisar con 48 h hábiles antes de la fecha fijada para el examen, y se le mantendría la nota original.